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从豆腐渣中果胶多聚糖的提取和精制和对它们的结构的酶的分析

作者:     
 

从豆腐渣中果胶多聚糖的提取和精制和对它们的结构的酶的分析

 

果胶多聚糖(6.74g)是用六偏磷酸钠溶液从豆腐渣中(豆腐副产品,30g)提取出来的。提取物由DEAE纤维素色谱法被分离成微量的半乳糖醛酸酯丰富的半乳糖醛酸酯片断。其多聚糖片段被完全地降解成三种果胶酶和两种半纤维素酶,即外切多聚半乳糖醛酸酶和内切多聚半乳糖醛酸酶,外切多聚半乳糖醛酸裂解酶、外切半乳糖醛酸酶和外切阿拉伯糖酶。降解极限的结果表明了大豆果胶多聚糖由半乳糖醛酸酯区域鼠李聚糖半乳糖醛酸区域运载的支链所组成,主要是同类的阿拉伯聚糖和半乳聚糖。半乳糖醛酸酯区域被分布在还原和未被还原的多聚糖的末端。版权--1996Elsevier科学有限公司

 

介绍

豆腐渣(豆腐副产品)是从大豆中提取出油和蛋白质以后的残渣。豆腐渣含有丰富的膳食纤维,特别是果胶的多聚糖(Higashira & Misaki,1988),它们与柑橘类植物果胶不同,因为豆腐渣果胶的多聚糖包含很多不确定的糖。这些果胶的多聚糖构成和序列已经被报导(Aspinall , 1967; Kawamura 1967 ; Kikuchi & Sugimoto, 1976), 但他们结构的许多方面还很难懂。

果胶的多聚糖通常由两个截然不同的区域组成,线性半乳糖区(GN)和支链半乳糖区(RG)(Barrett & Notrhcote 等,1965年;De Vries ,1986年;McCleary & Matheson 1986年;Matsuhashi 等,1989,1993)RG区域的支链主要由阿拉伯糖-4-半乳糖苷键组成,它们依次由被部分阿拉伯糖或者阿拉伯低聚糖取代的β-14-D-半乳糖苷键组成 (Dekker & Richardson, 1976)。在果胶酶分子学里GN区域数量和分布状态的判定,和阿拉伯糖-4-半乳糖苷键已经用酶HPLC法被检验了 (Matsuhashi等,1989年;Emi等,1971年;Labavitchi等,1976年;De Vries,1983年;Nakano等,1985年;Yamaguchi,1995)。相反大豆多聚糖GN区域的结构从未被检验除了内切-β-D-半乳糖苷键降解极限的研究(Emi 等,1971年;Labavitchi等,1976年;Yamaguchi,1995)

我们开始了对大豆果胶的多聚糖的研究为了发现它们最佳潜在的用途。在当今的工作中, 我们检验了豆腐渣中果胶多聚糖的提取和精制,估算了GN区域的数量和分布状态和支链的酶HPLC法。

 

材料和方法

实验材料

干燥的豆腐渣(豆花)Misuzu豆腐有限公司提供(长野,日本)

柑橘果胶中的酸性不溶果胶酸酯(AIP)被用作多聚半乳糖醛酸(Hatanaka & Ozawa, 1966)

阿拉伯-3,6-半乳聚糖(阿拉伯半乳聚糖,落叶松植物木头)ICN有限公司提供。

甜菜阿拉伯聚糖(Tagawa & Kaji,1969),玉米阿拉伯树胶酸对苄苯基甲酰胺(玉米阿拉伯树胶酸对苄苯基甲酰胺,Yamaguchi & Hatanaka,1993)和柑橘果皮中被交互相联的细胞壁(CLCW) (Hatanaka等,1990)作为早先描述。

其它化学制品(试剂等级)Nacalai Tesque (京都, 日本)供应。

外切多聚半乳糖醛酸(外切-PG区域)和内切多聚半乳糖醛酸(内切-PG区域)分别从红萝卜根中(Hatanaka & Ozawa,1964)和脆壁克鲁维酵的培养液中(Inoue 等,1984)中精制而得。外切多聚半乳糖醛酸裂解酶(PGL)从软腐欧文氏菌的培养液中精制而得。软腐亚菌IF0 13921 Kegoya 等人的方法制备(1984) 。崩溃酶溶液(Kyowa Hakkou Kogyo Co., 东京, 日本) 曾经被Matsuhashi 等人(1992)描述过。纤维素酶 (从曲霉菌中制备) Amano药品有限公司提供(名古屋, 日本, Yamaguchi , 1995).

果胶的多聚糖的提取

提取的效率被检验由替换相当数量干豆腐渣, 5 10 g 使用 250mL2% 的六偏磷酸盐溶液作为提取剂,条件在803.5 h;在提取期间酸碱度被调整了到3.5-4.0。萃取物被离心在6000 g 并且残滓用相同的溶液两次被反萃 (酸碱度2.5) 。各种萃取物用蒸馏水透析1 , 然后最后到真空吸尘器最后透析除去离子水。对收集到的溶液, 酒精被额外的增加到75%的体积分数。沉淀物由离心过滤法收集并且连续地用80%的酒精,99%的酒精和丙酮洗涤,然后风干。

DEAE 纤维素色谱法

NaCl 在磷酸盐缓冲中的线性梯度 (Hatanaka & Ozawa, 1968)

未加工的样品(400mL, 0.05% 溶液) 加入到DEAE 纤维素柱状物中(3 x 18 cm; 0.9 meq/g, 布朗公司。) 0.02 M 磷酸盐缓冲液平衡 (酸碱度6.0) 。在用相同的缓冲液洗涤样品以后, 柱状物在混合容器中被洗提了以一个线性梯度由450mL 0.02 M的 磷酸盐缓冲(酸碱度 6.0) 在混合容器中和一个蓄水池中包含0.6 M NaCl相同体积的缓冲器, 和最后与0.1 M NaOH 。流速是2.0 mL/min,然后收集10mL

总糖和醛糖的分数含量分别用苯酚硫酸法(Dubois 1956)和咔唑法(Galambos 1967)分析。记录下每种糖的最高分数含量,连续地用蒸馏水和去离子水渗析,然后用2体积的酒精混合。离心过滤后收集的沉淀物连续的用70%酒精,99%酒精和丙酮洗涤 ,然后风干。

酸碱梯度(9.0 -11.0) 的碳酸盐缓冲液(Hatanaka & Ozawa, 1966)

未加工样品加入到DEAE 纤维素柱状物中用0.02 M NaHC03 溶液平衡。用相同的溶液洗涤柱状物,柱状物被洗涤用酸碱梯度(9.0 - 11.0) 450mL0.1 M NaHC03在混合容器中和一个蓄水池中包含0.4 M Na2CO3相同体积的缓冲器,在混合船和0.1 M 的相等的容量Na2C03 在水库,最后加0.1 M NaOH 。记录下每种糖的最高分数含量,用安伯来特空气间隙离子交换树脂IR-120的消电离作用调整PH4.0。其他程序用相同的方法磷酸盐缓冲器洗提。

蛋白质含量

蛋白质含量由Lowry 的方法已测定(1951)。

大豆的分子量发行的估计果胶的多聚糖

分子量分布依据凝胶体滤清被估计。操作条件是如下: 柱状物, Asahipak GS-710 (7.6 x 500 毫米); 柱状物之前, Asahipak GS-20G (7.6 x 50 毫米); 溶剂, 0.02 M 醋酸盐缓冲器(酸碱度6.0); 流速, 1.0 mL/min; 探测器,微分折射计(Jasco TRI ROTAR-IV)注射剂: 50微升. Pullulans (Showa denko, 东京, 日本) 作为估计标准被使用。

中性糖和半乳糖醛酸酯的测量

中性糖和半乳糖醛酸酯含量由Matsuhashi 等人的(1992)-HPLC法计算。反应混合物包含0.1%试料溶液, 0.1%甘油(国内标准), 崩溃酶溶液(0.5 ml/ml)50mM 乙酸钠缓冲液 (酸碱度4.0)3548h下被繁殖,然后用微孔过滤器II GC过滤(1 x 104 Da对球状蛋白排阻限) 。滤出液用HPLC法在以下条件下分析: 管柱, Shodex SUGAR SH1821(8 x 300 mm); 前置柱, Shodex SUGAR SGlOllP

(6 x 50 mm); 管柱温度, 40; 流速, 1.0 mL/min; 流动相, 0.001 N H2S04

中立糖的结构被测量如下: 样品在1211 N TFA(Albersheim等人1967)被水解2h。水解产物在减少,加乙酰基,根据Kusakabe等人(1977)描述的GLC法分析,除了3%ECNSS-M (60-80目滤网) 玻璃管柱(3x2000mm) 被使用,管柱温度以1每分钟的速度从170上升到200

 

 

 

化验

多聚糖分解的活动由还原糖产生的量,被修改过的Somogyi方法(Hatanaka & Kobara,1980)计算 。

标准化验反应发生在0.1M乙酸钠中适当的多聚糖0.2%的溶液, 酸碱度4.0, 酶制剂准备在35120分钟,0.5ml总体积的条件下被繁殖.反应在增加0.5mL Somogyi的反应物被终止。产生的还原糖数量由Hatanaka(1980)法计算。酶单位被定义为解放被减少的糖1μmol的数额每分钟在上述条件下。

大豆多聚糖分离(SP)降解的酶(Yamaguchi1995)

纤维素酶混合物Amano 3(12 g)溶液加热处理20 分钟60,应用在DEAE-

toyopearl650 M10mL Tris-HCl缓冲液平衡的管柱(1.5 x 47 cm), 酸碱度 7.0.酶被一个线性NaCl梯度洗提,250mL10mM Tris-HCl缓冲液和同样的包含0.5 M NaCl的缓冲液在20mL每小时的流速下制备.洗提液被收集了10mL的片段,大豆多聚糖片段的降解活动由HPLC 分析。片段64-76(Fl)和片段77-84(F2)分别地包含从未加工样品中被降解的半乳糖和树胶醛醣。

酶的部份洗净

Fl

一种外切类型的半乳糖醛酸酯在Fl片段里被净化如下: NaCl被增加了Fl片段到4M, 溶液被应用在Butyl-toyopearl已经被20mM醋酸盐缓冲液平衡的650管柱(2 x 20 cm)以上,酸碱度4.0, 酶被一个线性NaCl梯度(0 M-0.5 M)洗提。片段被应用在交联的细胞壁(CLCW) 20mM醋酸盐缓冲平衡的管柱上(1.5 x 7cm) (Hatanaka ,1990; Matsuhashi & Hatanaka,1991), 酸碱度4.0。用相同的缓冲液洗净后,酶被50mM醋酸盐缓冲液洗提,pH4.5,包含0.5 N NaCl。为了获得更纯净的酶,浓缩液受到凝胶体过滤在被10mM醋酸盐缓冲液平衡的Sephacryl管柱S-200(1x92 cm),酸碱度4.5,包含0.25 M20 ml/h流速NaCl

F2

一种外切类型的阿拉伯树胶酸在F2片段里被净化用CLCW色谱法和胶凝体过滤如Fl片段所描述。

分子量的计算(Audrews,1965)

酶分子量利用Sephacryl S-200管柱由胶凝体过滤估算。磷酸化酶(94,000), 牛血清蛋白(68,000), 卵清蛋白 (45,000) chymotripsinogen (27,500)被作为标准使用。

半纤维素酶的水解产物的HPLC分析

反应混合物(总体积1.0 mL) 包含0.5%大豆多聚糖,0.1%丙三醇(HPLC的国内标准),酶制剂制备,50mM乙酸钠醋酸盐,酸碱度4.0,353 h-48 h繁殖。反应混合物用微孔过滤器II GC过滤 (对于球状蛋白质排阻限:1 x 104Da)。流出的滤出液(50μL) 使用Shodex SUGAR SH1821管柱进行HPLC分析。降解极限用Matsuhashi等人(1992)描述的HPLC法由测量中性糖和半乳糖醛酸酯来确定。

果胶多聚糖胶质的降解极限的HPLC 测量法

果胶的多聚糖果胶酶的降解极限由Matsuhashi等人的方法测量。(1989,1993)

反应混合物包含C-APS2 (0.05%), 丙三醇(O.l%, HPLC国内标准),醋酸钠缓冲液(50mM,酸碱度5.035,在外切和内切PG区域) tris缓冲液(50 mM, 酸碱度8.535,在外切PGL区域),(50 mU)3548 h下被繁殖;对于外切和内切区域的混合反应,每种酶的100mU/ml被使用。假如外切PGL和外切PG区域的降界顺序, 反应混合物包含0.1% C-APS2, 0.1% 丙三醇, 20mM tris缓冲液(酸碱度8.5,在35),外切PGL区域在3548 h下被繁殖。反应混合物被加入到一个相等体积的包含外切PG区域(25 mU)的乙酸钠缓冲液中(100 mM, 酸碱度5.0),上述混合液在3548 h放置。HPLC分析条件依照在早前介绍的论文的方法(Matsuhashi,1989,1993)做准备。

结果和讨论

从豆腐渣中果胶多聚糖的提取

1 显示在每种萃取物中的醛糖和蛋白质浓度(A280)。在5 g豆腐渣中,醛糖浓度在第一个萃取物中最高,然而蛋白质浓度在第三个萃取物中最大。在10 g豆腐渣中,醛糖和蛋白浓度都是在第二个萃取物中最大。这些结果表明大豆果胶多聚糖最完全地萃取用50体积2%的六偏磷酸钠溶液在803.5小时的条件下重复3次。

在结果被描述的基础上,果胶多聚糖(6.74 g)30 g豆腐渣中被萃取。第一次萃取物中产量是4.89g,分别地第二次1.02 g,第三次0.08 g。这里获得的多聚糖用在随后的分析中。

大豆果胶的多聚糖的净化

阴离子交换色谱法在碱性情况下是有名的为分离果胶的多聚糖的方法, 但这个方法不能应用在果胶上因为碱性脱脂作用β消除分裂半乳糖醛酸酯骨架(Hatanaka & Ozawa,1966)。然而,我们在这个工作中使用了碱性或酸性缓冲液的DEAE纤维素色谱法。

DEAE纤维素色谱法得到的磷酸盐缓冲液见图2(A)。大豆果胶多聚糖被分离成一个中性多聚糖片段(P-NPS)和两个酸性多聚糖片段, 用梯度洗提P-APSl和用NaOH溶液洗提P-APS2。这三个片段的产量分别是20.2 mg,198.3 mg42.7mg

DEAE纤维素色谱法用碳酸盐缓冲液进行见图2(B)。果胶的多聚糖也分成三个片段, C-NPS C-APSlC-APS2 。在这种情况下,然而,NaOH溶剂被使用时没有糖最大量被观测。三个片段的产量分别是17.0mg,91.0mg92.0mg

每个多聚糖的产量,蛋白质的含量和糖的结构见表1所示。蛋白质含量被DEAE纤维素色谱法大大地减少。醛糖含量由量热颇法获得,例如咔唑法(Galambos,1967)m-氢氧根法(Blumenkrantz & Asboe-Hansen,1973), 在产量上被估计比那些用酶-HPLC(Matsuhashi & Hatanaka,1992)分析更高。在这个试验中, 我们使用了既简单又准确的酶-HPLC法。在这个方法中那些被用作胶质降解的Drisalase24 h熟化以后(日期未作显示)完全地被水解成单元单位。

如果DEAE 纤维素色谱法使用碳酸盐缓冲液, 大多半乳糖醛酸酯残滓在C-APS2 片段里被洗提。在多聚糖片段里HPLC分析显示了所有的醛糖成分是半乳糖醛酸酯。(数据未被显示,Yamaguchi & Hatanaka,1993)

2显示了果胶多聚糖片段的中性糖结构;在每个片段里,半乳糖和树胶醛醣是主要的成分。木糖和葡萄糖的片段不同于彼此,但是在其它糖的成分之间有接近的类同之处。

每个片段的胶凝体过滤模式见图3所示.C-NPS低分子质量成分被提,在C-APSl C-APS2里那些未加工样品的主要成分的高分子质量组分被发现。C-APSlC-APS2主要成分的分子量被估算为大约500,000

SP降解半纤维素酶的部份洗净

为了检验半乳糖和树胶醛醣的分布,它们的多聚糖的主要成分,我们部份地净化外切类型的半纤维素酶。洗净的结果被总结在表3所示。在最后阶段的FlF2 的酶制剂准备大约分别净化了73.9折和 1377折在天然酶制剂之上。通过凝胶体筛选FlF2分子量被估计大约是75,000 55,000FlF2相对于大豆多聚糖的最大活动分别地反应在酸碱度4.04.5

FlF2的特征培养基见表4Fl能够降解所有的被检验的多聚糖, 并且F2的降解活动与阿拉伯树胶酸和玉米阿拉伯糖基木糖相反。结果表明F2 是一种高度被净化的阿拉伯树胶酸。

酶活力

未加工样品的水解产物由HPLC法的分析结果见图4 。不考虑反应时间从未加工样品中仅仅半乳糖醛酸酯和半乳糖用Fl分解。这些结果表明Fl有外切多聚半乳糖醛酸酶和外切半乳糖醛酸酶活性相反于未加工样品。F2分解树胶醛醣和HPLC 反应显示了一个以大约7.5 分钟的保留时间的峰顶。然而溶液在7.5 分钟内洗提不能改变苯酚硫酸反应的颜色,标志着它不是碳水化合物。此外,半乳糖醛酸酯,半乳糖和树胶醛醣(高峰值)FlF2的化合物分解。

外切类型的C-APSC-APS2的降解极限

5显示了由FlF2F1F2的化合物酶解的C-APS1C-APS2降解极限的结果。这些酶可降解每种中性糖的5090%。用F1F2降解的中性糖数量的总和等于由Fl F2的化合物降解的总数量。从净化的大豆果胶多聚糖中仅仅半乳糖和树胶醛糖用外切半乳糖醛酸酶和外切树胶醛糖酶被分解。从数据看,它能够推断出大豆果胶多聚糖的侧链由同类的聚合体组成。而且FlC-APS2中降解了半乳糖醛酸酯的3 1.2%。上述结果肯定了与相对于C-APS2获得利用净化外切PG区域的结果十分接近(6)

C-APS2GN地区的分布

大多多聚糖的半乳糖醛酸酯残滓是在C-APS2片段里。因此,我们在C-APS2里检验了半乳糖醛酸酯的分布区域来估计由估计果胶酶降解极限的数值。

6显示了几种果胶酶CAPS2的降解程度。大豆多聚糖被果胶酶降解。C-APS2的敏感性提出把半乳糖醛酸残渣的一部分放在一个线性直链的分子末端。只用外切PG区域的C-APS2的降解极限顺序比用由外切PG区域和外切PGL区域的混合物的C-APS2降解极限要低。结果提出两个半乳糖醛酸的存在减少和未减少C-APS2的分子末端。用外切PGL的降解程度别外切PG和内切PG的化合物高5.0%。这个结果显示没有半乳糖醛酸区域提出两个RG区域之间存在于分子量里(5)。外切和内切混合物的数量哪个应该最高,然而,比只用外切PGL区域获得的要低。未被怀疑的结果可能是一个结构障碍, 它导致了C-APS2的中性糖侧链不同于酶的活性。

 

 

 

结论

大豆包含阿拉伯树胶酸和果胶多聚糖作为他们细胞壁的主要组分。 Aspinall(1967)在去除蛋白质以后在8590℃用2% EDTA二钠盐提取多聚糖, DEAE 纤维素色谱法使用磷酸盐缓冲液净化。在这个报告中,我们用2%的六偏磷酸钠溶液提取多聚糖,多聚糖用DEAE纤维素色谱法使用碳酸盐缓冲液净化。用先前的色谱法作为一个峰值被洗提的果胶多聚糖用我们的方法被分离成2个峰值,使它比先前完成的更进一步的做好净化准备。

虽然大豆多聚糖的部份序列已经被报告,它的整体分子结构未被描述(Aspinall 1967; Kawamura 1967; Kikuchi & Sugimoto, 1976)。一般,果胶多聚糖由最高被占用分子轨道半乳糖醛酸酯组成(中性糖的平滑区域和杂交区域和那些位于半乳糖醛酸酯的半乳糖醛酸区域(多毛区域)(De Vries,1986;Matsuhashi,1993) 。但是Matsuura (1973)已经报道了云豆果胶多聚糖用多聚半乳糖醛酸酶仅被降解了很小的程度,表明它包含了很少的半乳糖醛酸酯。假如侧链, 它只被报道它由同类的内切-β-D-半乳糖醛酸酶降解极限的半乳糖体 (Emi 1971; Labavitchi 1976; De Vries , 19831985; Yamaguchi , 1995) 。所以我们利用了三种类型的果胶酶和二种类型的纤维素酶检查结构。降解极限的数值显示了大豆果胶的多聚糖包含半乳糖醛酸酯区域和鼠李半乳糖苷酸区域, 并且半乳糖醛酸酯区域被分布在两个还原和未还原的分子末端。另外,从鼠李半乳糖苷酸区域的侧链分支主要由类同的阿拉伯糖和半乳糖体组成。

 

 
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